Бактериологическое исследование мокроты при пневмонии


Пневмония: исследование мокроты

Пневмония – это достаточно опасное в прогностическом плане заболевание дыхательной системы, которое проявляется воспалением нижних отделов респираторного тракта и паренхимы легких. Его диагностика базируется на оценке жалоб и объективного статуса больного, физикальных данных. Из дополнительных (инструментальных и лабораторных) методов обследования золотым стандартом диагностики является проведения обзорной рентгенограммы, которая в большинстве случаев подтверждает либо же опровергает предварительный диагноз, а помимо этого, показывает локализацию воспалительного процесса. Все остальные анализы (общий анализ крови, мочи, посев мокроты), по своей сути, имеют ретроспективное значение, хотя некоторые необходимы для проведения дифференциальной диагностики, а также исключения фоновых (сопутствующих) заболеваний. Теперь касательно анализа мокроты. Мокрота – это патологический секрет, который выделяется (отходит) в результате воспалительного процесса в респираторном тракте, который затрагивает слизистую оболочку дыхательных путей. Кроме того, нарушается функционирование клеток реснитчатого эпителия, которые ответственны за выведение этого секрета, что, в свою очередь, вызывает кашлевой рефлекс, сопровождающийся выделением мокроты. При пневмонии исследование мокроты надо проводить обязательно, несмотря на то, что это исследование не является золотым стандартом диагностики. Мокроты отходит меньше, чем при бронхоэктатической болезни, но собрать ее не проблема.

В результате микроскопического исследования определяется (в самую первую очередь) характер окраски (цвет) клеточной стенки микроорганизмов по Грамму – уточняется их принадлежность к грамположительным или же к грамотрицательным микроорганизмам.

Это обследование занимает не более нескольких часов и помогает в значительной степени определиться с эмпирической антибиотикотерапией (то есть, лечением антибиотиками широкого спектра действия). Следует учесть, что даже среди антибактериальных препаратов есть те, которые рекомендованы в большей мере против грамположительных микроорганизмов (бета-лактамы – защищенные пенициллины, такие как амоксициллин, а также цефалоспорины первых двух поколений – цефазолин и зинацеф), а есть такие, которые будут в большей степени эффективны при патологии, вызванной грамотрицательной флорой – (цефтриаксон, цефоперазон, цефепим). Точное определение вида возбудителя и его чувствительности к определенным антибиотикам – занятие достаточно продолжительное, а потому его результаты будут актуальны только лишь в том случае, если назначенная в первый день заболевания антибактериальная терапия окажется неэффективной. Эта методика реализуется в крупных стационарах, где есть круглосуточная лаборатория.

Важным моментом в исследовании мокроты при пневмонии является, в большей мере, определение сопутствующих заболеваний. Главным образом – это присутствие микобактерии туберкулеза (палочки Коха) или же бронхиальной астмы (при этом заболевании также есть патогномоничные признаки в анализе мокроты). Обязательно оценивается цвет мокроты.

Проведение подготовки больного к сдаче мокроты

  1. Забор мокроты в обязательном порядке должен проводиться еще до начала антибактериальной терапии, так как, в противном случае, велика вероятность ложноотрицательного результата.
  2. Сдавать мокроту надо только утром, до приема пищи. Обязательно надо почистить зубы, для того, чтобы бактерии, входящие в состав зубного налета не попали в анализ.
  3. На ночь больному принять муколитик (одну таблетку амброксола или лазолвана) и большое количество жидкости, для того, чтобы облегчить отхождение патологического секрета. Отходит мокрота лучше после приема щелочной минеральной воды.
  4. Непосредственно сбор мокроты должен проводиться только после откашливания, следующего сразу же за максимально глубоким вдохом – только таким образом можно будет получить патологический секрет из максимально удаленных отделов респираторного тракта. Собирать мокроту необходимо только лишь в специальные пластиковые стерильные контейнеры (они продаются в аптеке, их цвет – белый или прозрачный). Собирать анализ от каждого больного необходимо в две емкости.
  5. В максимально короткие сроки доставить материал в лабораторию. Если за время транспортировки изменился цвет мокроты – собранный материал подлежит утилизации

Плюсы и минусы метода

Чаша Петри для исследования биоматериала.

Следует отметить, что даже при том условии, что мокрота будет собрана идеально правильно, велика вероятность ложноположительных или же ложноотрицательных результатов. Для повышения достоверности этого метода диагностики анализ берется в две емкости, однако, и это далеко не всегда гарантирует успех. Большое значение в проведении этого анализа имеет человеческий фактор. Кроме того, если материал в самые короткие сроки не был доставлен в лабораторию, вероятность получения достоверных результатов близка к нулю. Атипичные возбудители вообще невозможно высеять на питательную среду. Однако, вместе с тем, этот метод диагностики в разы дешевле, чем проведение полимеразной цепной реакции, так что не теряет своей актуальности и по сегодняшний день, несмотря на интенсивное развитие передовых технологий в лабораторной диагностике.

Этапы проведения

На данный момент общепринятым стандартом является исследование мокроты, предполагающее четыре этапа:

  1. Визуальная оценка образца. Определяется цвет мокроты, мутность, консистенция, запах.
  2. После этого проводится микроскопический анализ. На этом этапе определяется наличие микроорганизмов в анализе как таковых, кроме того – поддается ли их клеточная стенка окраске по Грамму (необходимо оценить цвет клеточной стенки высеянных бактерий).
  3. После этого проводится микробиологический анализ – непосредственно высев патогенного микроорганизма на питательные среды с определением в дальнейшем чувствительности к антибиотикам.
  4. И только после этих всех этапов, разрешается биохимический анализ. Проводится с целью определения наличия крови (сгустков, которые невозможно визуализировать), выявления уровня определенных биологически активных веществ, ферментов, белков и так далее.

На рисунке: цифрой 1 и 2 обозначаются элементы, характерные для эозинофильных изменений в анализе мокроты. Пневмонию не исключает, но больше характерно для бронхиальной астмы.

Какие результаты анализа говорят о развитии воспаления легких?

Если у человека имеет место воспаление легких, то в анализе мокроты, скорее всего, будут отмечаться следующие изменения:

  1. Количество отделяемой мокроты не превышает сто мл за день; в том же случае, если наблюдается увеличение количества отделяемого секрета, это будет свидетельствовать о наличии отрицательной динамики течения воспалительного процесса.
  2. Возможно будет изменение цвета мокроты – желтый цвет укажет на эозинофильный характер воспалительного процесса, бурый цвет – на то, что имеет место крупозная пневмония или же на то, что воспаление легких вызвано вирусом гриппа. Изменение цвета – неблагоприятный прогностический признак.
  3. Значение рН выше или же равняется семи (то есть щелочная или нейтральная реакция).
  4. При микроскопическом исследовании, как правило, будут обнаружены наиболее распространенные возбудители воспаления легких – стафилококки, стрептококки, пневмококки, намного реже – гемофильная палочка и прочие микроорганизмы. Атипичную флору (хламидии, микоплазмы, легионеллы) высеять невозможно по определению, так как эти микроорганизмы проявляют себя исключительно в клетках организма-хозяина (то есть, они являются облигатными внутриклеточными паразитами). В том случае, если пневмония вызвана вирусами, установить это при посеве мокроты также не получится. Посев на определение вирусов – это очень сложный и дорогостоящий анализ, требующий использования оборудования и реактивов лаборантом только с очень высокой квалификацией, прошедшего курс специальной подготовки.
  5. Очень важно определить в мокроте наличие или же отсутствие микобактерии туберкулеза и гемосидерина (продукта распада гемоглобина). Эти показатели в значительной мере изменят тактику ведения пациента. Обнаружение палочки Коха укажет на открытую форму туберкулеза у больного и укажет на необходимость его госпитализации в противотуберкулезный диспансер, наличие гемосидерина будет свидетельствовать о наличии крови в мокроте, что также является крайне неблагоприятным в прогностическом плане признаком. После определения любого из этих показателей тактика ведения больного должна быть пересмотрена в обязательном порядке.

Выводы

Анализ мокроты при пневмонии не может на сто процентов подтвердить диагноз или опровергнуть его, однако, благодаря этому исследованию можно провести дифференциальную диагностику или же внести корректировки в схемы лечения, тактику ведения больного. После получения его результатов в большинстве случаев никаких корректив в лист назначения не вносится, однако все-таки перестраховаться надо обязательно. Лучше убедиться в отсутствии сопутствующих заболеваний, чем после совершенной ошибки в диагностическом алгоритме лечить осложнения болезни.

Советуем почитать: Проведение анализа крови при пневмонии

Видео: Воспаление лёгких — Школа доктора Комаровскогом

ИССЛЕДОВАНИЕ МАТЧИ

Исследование мокроты в основном проводится на:

  • Идентификация возбудителя или организма , связанного с конкретной подозреваемой инфекцией нижних дыхательных путей, например
    - Подозрение на туберкулез
    - Пневмония, особенно тяжелая или у хозяина с ослабленным иммунитетом
    - Пневмоцистная пневмония carinii у ВИЧ-инфицированных
    - Подозрение на грибковую инфекцию
    - Инфекционное обострение хронического заболевания, такого как бронхоэктазы
  • Цитологическое исследование для исследования вирусных инфекций (вирусные включения в инфекциях cytomegalovirus и herpes simplex ), грибковой инфекции, асбестозе и злокачественных клетках.

ЗАБОР мокроты

  1. Образец мокроты лучше всего собирать утром (поскольку секреты накапливаются за ночь), вскоре после пробуждения и перед приемом жидкости для полоскания рта или еды.
  2. Образец мокроты собирается в стерильный, чистый, сухой пластиковый контейнер с широким горлом и плотно закрывающейся навинчивающейся крышкой. Контейнер должен быть из небьющегося или ударопрочного пластика, герметичного, чтобы предотвратить высыхание и образование аэрозолей, и иметь емкость около 30 мл.
  3. Пациенту рекомендуется 2-3 раза сделать глубокий вдох, заполняя легкие, глубоко кашлять и плюнуть в пластиковый контейнер. Собирается около 2-5 мл мокроты. Образец, состоящий только из слюны (водянистой, прозрачной и пенистой), не допускается для лабораторных исследований; в таком случае следует собрать еще одну пробу. Емкость с образцом мокроты надежно закрыта крышкой и должным образом промаркирована.

Индукция мокроты

Если пациент не может спонтанно откашливать мокроту, вдыхание аэрозоля 15% хлорида натрия (NaCl) и 20% пропиленгликоля (C 3 H 8 O 2 ) в течение 20 минут может вызвать отхождение мокроты.Мокрота также может быть вызвана вдыханием дистиллированной воды в сочетании с физиотерапией грудной клетки или вдыханием распыленного гипертонического раствора.

Для микробиологического исследования мокроты следует немедленно отправить образец в лабораторию. Если дать мокроте отстояться, произойдет быстрое размножение заражающей бактериальной флоры из горла и полости рта, что приведет к неверным результатам. Кроме того, патогенный организм, особенно Haemophilus influenzae , не выживает в течение длительного времени в собранном образце.Образец мокроты для бактериального посева нельзя хранить в холодильнике.

Если образец должен быть доставлен в удаленную лабораторию для микобактериальной культуры, необходимо собрать мокроту в 25 мл следующего раствора:

  • N-ацетилпиридиния хлорид 5 г
  • Натрия хлорид 10 г
  • Вода дистиллированная 1000 мл

ПОЯВЛЕНИЕ МАТЧИ

Внешний вид мокроты часто является признаком и симптомом основного патологического процесса, а именно:

  • Кровь: Кровохарканье (туберкулез легких, бронхогенная карцинома, бронхоэктазы, абсцесс легкого, инфаркт легкого, митральный стеноз)
  • Кровянистый и студенистый (красное желеобразное желе): Klebsiella pneumonia
  • Расти: Пневмококковая крупозная пневмония
  • Гнойный, разделяющийся на 3 слоя при стоянии: Абсцесс легкого, бронхоэктазы
  • Обильное количество гнойной мокроты: Бронхоплевральный свищ, абсцесс легкого, бронхоэктазы
  • Зеленый: Pseudomonas Инфекция
  • Розовый, пенистый (пузырьки воздуха): Отек легких

МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ мокроты

Образец мокроты обычно фальсифицирован и загрязнен нормальной флорой глотки и полости рта.Нормальная флора глотки и полости рта приведена ниже.

  • Грамположительные микроорганизмы: Диптероиды , стрептококки ( S. pneumoniae , S. viridans ), стафилококки ( S. epidermidis , S. aureus ), лактобациллы, энтерококки (, дрожжи) Candida spp.), Микрококки.
  • грамотрицательные микроорганизмы: колиформ, Haemophilus spp; Neisseria spp; Moraxella catarrhalis, фузобактерии.

Окрашивание по Граму

Патогенные организмы, обнаруженные в мокроте, включают:

  • Грамположительные: Staphylococcus aureus , Streptococcus pyogenes , Streptococcus pneumoniae .
  • Грамотрицательные: Klebsiella pneumoniae , Moraxella catarrhalis , Haemophilus influenzae , Yersinia pestis , Pseudomonas aeruginosa .

Для бактериологического исследования мокроты образец должен быть обработан в лаборатории в течение часа после забора.Небольшое количество мокроты переносится в стерильную чашку Петри и фиксируется ее внешний вид. Из гнойной части мокроты с помощью чистой палочки делают тонкий мазок на обезжиренном стерильном предметном стекле. Слайд сушат на воздухе, фиксируют и окрашивают по Граму. Полностью водянистые, слизистые, белые или пенистые образцы часто показывают плоские эпителиальные клетки, покрытые скоплениями бактерий; это явление указывает на то, что образец состоит в основном из выделений изо рта и глотки.Такие образцы не допускаются для бактериологического исследования (см. Рисунок 989.1). Культура не проводится, если количество полиморфно-ядерных нейтрофилов менее 10 на эпителиальную клетку.

Рисунок 989.1 Неприемлемый образец мокроты: образец мокроты показывает множество плоскоклеточных клеток, покрытых скоплениями бактерий

Из-за наличия различных контаминирующих грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов, происходящих из горла и рта (нормальная бактериальная флора), окрашенный по Граму мазок мокроты должен быть тщательно изучен.

Морфологический вид бактериальных клеток на мазке, окрашенном по Граму, имеет запах определенного микроорганизма, а именно:

  • Грамотрицательные диплококки, как внутри-, так и внеклеточные: Moraxella catarrhalis .
  • грамположительные дрожжевые клетки с почкованием и псевдогифами: Candida .
  • грамположительные диплококки с окружающим прозрачным пространством (капсула): S. pneumoniae (см. Рисунок 989.2).
  • Грамотрицательные коккобациллы: H. influenzae .
  • Грамположительные кокки в гроздьях, напоминающих виноград: S. aureus .
  • Крупные гранулы с грамотрицательным центром и грамположительным периферией: Actinomyces .

Рис. 989.2 Мазок мокроты, окрашенный по Граму, показывающий грамположительные диплококки (Streptococcus pneumoniae)

Бактериологическая культура

В питательную среду вносят хлопья гнойной части мокроты для абсолютной идентификации микроорганизмов.Образец мокроты считается непригодным для бактериальной культуры, если он содержит> 25 клеток плоского эпителия / поле с низким увеличением. Идеальный образец мокроты для бактериальной культуры содержит клетки бронхиального эпителия, многочисленные нейтрофилы (> 5 / поле при высоком увеличении), альвеолярные макрофаги и несколько клеток плоского эпителия (<10 / поле при высоком увеличении). Слюна вымывается из мокроты стерильным физиологическим раствором, чтобы уменьшить количество заражающей нормальной бактериальной флоры в посевном материале. На пластину с кровяным агаром и шоколадный агар (нагретый кровяной агар) засевают промытую мокроту.Чашку с шоколадным агаром инкубируют в атмосфере избыточного количества диоксида углерода (CO 2 ), а пластину с кровяным агаром инкубируют в аэробных условиях. После инкубации в течение 18 часов чашки с засеянным агаром исследуют на рост; если рост недостаточен, показана инкубация в течение следующих 24 часов. Тест на чувствительность к антибиотикам проводится только при значительном росте бактерий.

ИССЛЕДОВАНИЕ МАТЕРИАЛА НА ТУБЕРКУЛЕЗ МИКОБАКТЕРИЙ

Туберкулез - серьезная проблема общественного здравоохранения в Пакистане и Индии .Ранняя диагностика туберкулеза легких приведет к раннему назначению лечения, способствующему излечению, а также препятствующему распространению болезни среди других. В последнее время увеличилось количество заболевших туберкулезом. Всемирная организация здравоохранения назвала это глобальной чрезвычайной ситуацией. Широко растет также туберкулез с множественной лекарственной устойчивостью.

Комплекс Mycobacterium tuberculosis состоит из M. tuberculosis , M. africanum и M.bovis . Эти туберкулезные палочки являются возбудителями туберкулеза у человека. Остальные микобактерии называются нетуберкулезными.

Существует два основных подхода к идентификации туберкулеза.

  1. Прямой тест: Это включает обнаружение M. tuberculosis или его компонентов
  2. Косвенный тест: Он заключается в обнаружении клеточного или гуморального иммунного ответа на туберкулезную инфекцию.

Прямые тесты для выявления туберкулеза в образце мокроты:

  1. Исследование мазка мокроты
    - Метод Циля-Нильсена
    - Флуоресцентная микроскопия
  2. Молекулярный метод
  3. Культура на стандартных средах
  4. Коммерческая автоматизированная система культивирования

Исследование мазка мокроты

Для обнаружения M.tuberculosis необходимо исследовать минимум три образца мокроты, взятых в трех разных случаях (включая как минимум один образец мокроты ранним утром). Тонкий мазок мокроты готовится на чистом, стерильном, обезжиренном предметном стекле из желтоватой, сероватой, непрозрачной или окрашенной кровью части мокроты. Дети часто глотают мокроту и не могут ее откашлять; в таком состоянии образец желудочного сока натощак может быть аспирирован и исследован как мокрота.

Мазок окрашивают красителем Циля-Нильсена и исследуют под масляной иммерсионной линзой в обычном световом микроскопе.При наличии флуоресцентного микроскопа мазок можно исследовать после окрашивания его флуорохромом (аурамин О или аурамин-родамин).

Окраска мазка мокроты по Цилю-Нильсену: Этот метод очень простой, быстрый и недорогой. Этот метод в основном используется для:

  • Диагностика туберкулеза легких. (Положительный результат мазка мокроты является основным источником распространения инфекции).
  • Определение излечения или неудачи лечения.
  • Оценка ответа на противотуберкулезное лечение.

Мазок мокроты, окрашенный по Цилю-Нильсену, считается положительным, если в мокроте присутствует 5000–10000 туберкулезных микобактерий / мл. Сообщается, что чувствительность метода составляет 60-80%. Возможности обнаружения туберкулезных микобактерий повышаются, если исследуются несколько образцов мокроты или используется метод концентрирования отбеливателя. В технике концентрирования отбеливателя к образцу мокроты добавляется раствор концентрированного гипохлорита натрия (NaOCl), что вызывает разжижение слизи и уничтожение микобактерий.Образец оставляют для ночного осаждения (или центрифугирования), из осадка мокроты готовят, окрашивают и исследуют тонкий мазок.

При окрашивании по Цилю-Нильсену микобактерии выглядят как ярко-красные прямые или слегка изогнутые круговые дорожки (0,2-0,5 мкм в ширину и 2-4 мкм в длину) на зеленом или синем фоне (см. Рисунок 989.3). Микобактерии, устойчивые как к кислотам, так и к алкоголю, называются кислотоустойчивыми бациллами (КУБ). Прежде, чем мазок будет признан отрицательным, исследуется не менее 100 полей.Если обнаружены кислотоустойчивые бациллы, следует сообщить об их количестве.

Отрицательный результат мазка мокроты не исключает диагноза туберкулеза, поскольку мазок может быть плохого качества или микроорганизмов может быть мало, или образец мокроты может быть взят неправильно. См. Также: Кислотно-быстрое окрашивание: цель, принцип, процедура и наблюдение

Рисунок 989.3 Мазок мокроты, окрашенный красителем Циля-Нильсена, показывает кислотоустойчивые бациллы

Флуоресцентная микроскопия: Готовят тонкий мазок мокроты и окрашивают флуорохромом (аурамин О или аурамин-родамин).Мазок исследуют под флуоресцентным микроскопом. Микобактерии выглядят ярко-желтыми на темном фоне (см. Рис. 989.4). Этот метод очень простой и быстрый (поскольку мазок мокроты исследуется под линзой с малым увеличением), и этот метод очень полезен, если микроорганизмов мало. Крайне необходимо подтвердить положительный результат мазка мокроты с помощью окрашивания по Цилю-Нильсену, так как существует высокий уровень ложноположительных результатов.

Рисунок 989.4 Демонстрация микобактерий в мокроте с помощью флуоресцентной микроскопии.Бациллы выглядят как желтые флуоресцентные палочки с аурамином О на темном фоне

Молекулярный метод

Существует два разных метода молекулярной диагностики туберкулеза в образцах мокроты:

  • Обнаружение Mycobacterium tuberculosis в изолятах из культуры с помощью зондов нуклеиновых кислот.
  • Прямое обнаружение Mycobacterium tuberculosis в образце мокроты.

М.tuberculosis можно быстро обнаружить непосредственно в образцах мокроты путем выявления специфических для него последовательностей ДНК. В комплексе M. tuberculosis , IS 6110 является целевой ДНК, поскольку она наблюдается только в комплексе M. tuberculosis . В геноме M. tuberculosis присутствуют множественные копии этой последовательности. С помощью этого метода можно обнаружить 10-1000 организмов на мл мокроты. Другие последовательности ДНК и РНК, точные для комплекса M. tuberculosis , также могут быть мишенями.

Лабораторное перекрестное заражение (из-за продуктов ПЦР в виде аэрозоля) также является причиной недостоверных и ложноположительных результатов. ПЦР усиливает последовательности ДНК как мертвых, так и живых бацилл, по этой причине тест не может использоваться для оценки ответа на терапию. Этот тест тоже стоит дорого. Анализы на основе ПЦР следует разъяснять с учетом клинических особенностей, результатов мазка мокроты по Цилю-Нильсену и наличия туберкулеза у других членов семьи.

Посев мокроты (обычный)

Для окончательной диагностики туберкулеза используется метод чистой культуры. M. tuberculosis выделен из культурального образца мокроты. Посев мокроты обычно проводят на:

  • Идентификация конкретного вида, если подозревается другой организм, кроме M. tuberculosis (для целей заболеваемости, распространения и борьбы с болезнями).
  • Тестирование лекарственной чувствительности.
  • Диагностика у пациентов с отчетливыми рентгенологическими и клиническими признаками туберкулеза, но с отрицательным мазком мокроты.

Посев мокроты более чувствителен по сравнению с исследованием мазка мокроты. Он может обнаруживать от 10 до 100 микроорганизмов в 1 мл образца мокроты. Его чувствительность для выявления туберкулеза составляет 80-85%, а специфичность - 98%. Однако эта процедура очень дорогая, но надежная, для получения результата требуется около 6 недель, а для определения лекарственной чувствительности требуется еще больше времени, а для уничтожения нормальной бактериальной флоры требуется более раннее обеззараживание мокроты.

Заражающие бактерии быстро растут и переваривают питательную среду до того, как туберкулезные палочки начнут расти.Поэтому необходимо обеззараживать образец мокроты, добавляя 4% гидроксид натрия (используемый как обеззараживающее средство).

Стандартные питательные среды для выделения M. tuberculosis :

  • Твердая среда: На основе агара (Миддлбрук 7h20 или 7h21) или на основе яиц (среда Левенштейна-Йенсена).
  • Жидкая среда: Миддлбрук 7H9, Миддлбрук 7h22.

Наиболее распространенной твердой средой, используемой для культивирования, является среда Левенштейна-Йенсена.Для видимого роста микобактерий требуется до 6 недель. Для идентификации видов проводятся дальнейшие биохимические тесты.

Коммерческие автоматизированные системы культивирования

В настоящее время коммерчески доступны системы быстрого автоматического культивирования, которые могут дать результаты в течение двух недель (вместо шести недель со стандартной средой). Однако эта процедура стоит дорого. Примерами таких систем являются система BACTEC ™ 460TB (см. Рисунок 989.5) и автоматический анализатор культур крови BACTEC ™ 9050 (Becton-Dickinson Diagnostic Instruments Systems, Мэриленд, США).Эти инструменты очень чувствительны и могут обнаруживать M. tuberculosis в клинических образцах. В этом методе используется бульон, в который интегрирован радиоактивно меченный 14 C-пальмитат. Микобактерии метаболизируют 14 C-пальмитат до радиоактивно меченного 14 CO 2 , что в дальнейшем обнаруживается прибором.

Рисунок 989.5 Система BACTEC ™ 460TB

ИССЛЕДОВАНИЕ МАТЕРИАЛА НА ОРГАНИЗМЫ, ЗА ИСКЛЮЧЕНИЕМ BACILLI

Дальнейшие интерпретации, приведенные ниже, демонстрируются при подозрении на заражение следующими организмами:

  • Paragonimus : Солевой раствор мокроты для анализа яиц.
  • Гистоплазмоз : Мазок Гимзы.
  • Pneumocystis carinii : жидкость бронхоальвеолярного лаважа, окрашенная окрашиванием по Гимзе и серебром (см. Рис. 989.6).
  • Yersinia pestis (легочная чума): мазок Гимзы.
  • Aspergillus : Гидроксид калия, мокрый образец мокроты.
  • Дрожжеподобные организмы в мазке по Граму: декстрозный агар Сабуро.
Рисунок 989.6 Кисты Pneumocystis carinii в жидкости бронхоальвеолярного лаважа (окраска метенамином серебром)

ЦИТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ МАТЧИ

Цитологическое исследование мокроты обычно проводится для диагностики бронхогенной карциномы. Иногда он также может быть полезен для идентификации грибов, простейших, асбестовых телец и вирусных включений (например, цитомегаловируса и вируса простого герпеса ).

Для цитологического исследования предпочтительно брать образец мокроты рано утром.Для диагностики рака легких рекомендуется брать образец мокроты ежедневно в течение первых пяти дней подряд. Этот метод увеличит шансы обнаружения злокачественных клеток (см. Рис. 989.7).

Рисунок 989.7 Исследование мокроты выявляет злокачественные клетки плоскоклеточного типа

Образец мокроты может быть получен спонтанно или искусственно. Если пациент не может спонтанно откашливать мокроту, вдыхание аэрозоля из 15% хлорида натрия (NaCl) и 20% пропиленгликоля (C 3 H 8 O 2 ) в течение 20 минут может вызвать отхождение мокроты.Обычно это приводит к получению достаточного количества мокроты.

Образец мокроты следует отправить в лабораторию сразу после сбора без добавления какого-либо фиксатора. Если образец должен быть доставлен в удаленную лабораторию, рекомендуется префиксировать мокроту фиксатором Saccomano. Это включает сбор мокроты в смеси 2% карбовакса и 50% этилового спирта.

В лаборатории готовят тонкий мазок мокроты на чистом, стерильном, обезжиренном стекле из желтоватого, сероватого, непрозрачного или окрашенного кровью участка или из фрагментов ткани в мокроте, окрашенных методом Папаниколау.Образец мокроты считается пригодным для цитологического исследования. В мазке видны клетки бронхиального эпителия или альвеолярные макрофаги.

Средняя чувствительность исследования мокроты на злокачественные клетки составляет около 65%. Чувствительность увеличивается при следующих условиях:

  • Размер опухоли большой.
  • Поражение располагается в центре, а не на периферии легкого.
  • Гистологический тип карциномы имеет плоскоклеточную природу, а не аденокарциному или мелкоклеточный рак.
  • Исследовано увеличенное количество образцов мокроты.
.

Бактериологическое исследование мокроты | Бел Медик

ЧТО ТАКОЕ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ мокроты?

Бактериологическое исследование мокроты - это тест для обнаружения и демонстрации присутствия бактерий или грибков, вызывающих легочные и респираторные инфекции. Мокрота - это густая жидкость, вырабатываемая в легких и дыхательных путях.

ПОКАЗАНИЯ / ПОЧЕМУ ЭТО ДЕЛАТЬ?

• Для выявления и подтверждения инфекции у пациентов с такими проблемами, как затрудненное дыхание, жар, кашель.

• Чтобы выбрать лучшую и наиболее эффективную терапию для пациентов с доказанной инфекцией легких.

• Для наблюдения за эффектами и эффективностью терапии.

КАК ЭТО ВЫПОЛНЯЕТСЯ?

• Образец мокроты лучше всего собирать рано утром, прежде чем что-либо есть или пить. В некоторых случаях (особенно если образец взят при подозрении на туберкулез) необходимо собрать три или более утренних пробы.

• Для правильного отбора пробы необходимо сделать глубокий вдох и как можно сильнее прижаться к коллектору проб.Рекомендуется несколько раз сделать глубокий вдох, затем несколько раз покашлять, чтобы вы вдохнули глубже и максимально сильно, чтобы можно было выдавить содержимое в миску. Медицинский работник может помочь вам, разминув грудь. Если после этого вы не можете вылечить содержимое легких, медицинский работник сделает вам ингаляцию, которая поможет вылечить адекватную структуру селезенки.

• Когда образец будет взят, он будет помещен в емкости с питательными веществами, которые способствуют росту бактерий и грибков.Вы будете ждать 2-3 дня бактериологического исследования мокроты (сколько времени нужно для роста бактерий). Для роста грибка часто требуется неделя или больше. Вспышка бактериального туберкулеза (Mycobacterium tuberculosis) ожидается в течение 6-8 недель. Если присутствие микроорганизма доказано, проверяется гиперчувствительность микроорганизма к антибиотикам / фунгицидам. Содержимое контейнера может помочь вам в этом. ПРОВЕРЕТЕ ТЕКСТ НА САЙТУ, НЕДОВРСЕНА ЖЕ РЕЦЕНИКА…

ПОТЕНЦИАЛЬНЫЕ РИСКИ

У вас может появиться ощущение сухости в горле после взятия образца мокроты.Если у вас тяжелая форма астмы или бронхита, вам может быть трудно глубоко дышать при сборе образца мокроты.

ПОДГОТОВКА

• Перед взятием утреннего образца мокроты рекомендуется не есть и не пить.

• Не используйте жидкость для полоскания рта, так как она может содержать вещества, влияющие на результаты теста.

• Если вы носите брекеты, вам нужно будет снять их перед сбором образца мокроты, после снятия брекетов промойте рот водой.

• Если во время бронхоскопии будет взят образец мокроты, ваш врач даст вам подробные инструкции о том, как подготовиться к этой процедуре. (См .: Бронхоскопия)

• Сообщите своему врачу, если вы недавно принимали какие-либо антибиотики, и укажите, какие это были антибиотики.

ВОССТАНОВЛЕНИЕ

После этого процесса вы можете вернуться к своей обычной повседневной деятельности.

.

Исследование мокроты в диагностике пневмонии Pneumocystis carinii при синдроме приобретенного иммунодефицита.

 @article {Rio1988SputumEI, title = {Исследование мокроты при диагностике пневмонии, вызванной Pneumocystis carinii, при синдроме приобретенного иммунодефицита.}, автор = {C. Дель Рио и Дж. Гварнер, Эрик Дж. Хониг и Б. Слейд}, journal = {Архив патологии и лабораторной медицины}, год = {1988}, объем = {112 12}, pages = { 1229-32 } } 
Чтобы изучить роль исследования мокроты в диагностике пневмонии Pneumocystis carinii у пациентов с синдромом приобретенного иммунодефицита (СПИД), мы провели проспективное исследование 30 пациентов со СПИДом или с подозрением на СПИД.Мокрота была получена непосредственно перед бронхоскопией путем спонтанного кашля (20 пациентов) или индукции с помощью небулайзера с солевым раствором (10 пациентов). Pneumocystis carinii был диагностирован с помощью бронхоальвеолярного лаважа у 13 из 30 пациентов; у двух из этих пациентов была рак ... ПРОДОЛЖИТЬ ЧТЕНИЕ

Сохранить в библиотеку

Создать оповещение

Цитировать

Запустить ленту исследований

.

[PDF] Оценка окраски мазка мокроты при внебольничной бактериемической пневмонии.

 @article {Gleckman1988SputumGS, title = {Оценка окраски мазка мокроты при внебольничной бактериемической пневмонии.}, автор = {R. Глекман, Дж. Девита, Д. Хиберт, К. Пеллетье и Р. Март {\ 'i} n}, journal = {Журнал клинической микробиологии}, год = {1988}, объем = {26 5}, pages = { 846-9 } } 
Проспективное исследование было проведено в течение 4,5-летнего периода для определения способности окрашивания мокроты по Граму предсказать причину внебольничной бактериальной пневмонии.Изолят посевов крови, а не посев мокроты, служил эталонным стандартом для точной идентификации этиологического агента. Исследуемая популяция включала 59 взрослых с бактериемией, у которых был откашливался действительный образец мокроты. Представлены данные, указывающие на то, что врачу помогает морфология окрашенного… ПРОДОЛЖИТЬ ЧТЕНИЕ

Сохранить в библиотеке

Создать уведомление

Cite

Запустить Research Feed

.

Смотрите также